Hierro Triple Azúcar Agar (TSI)

Aplicaciones principales

• Laboratorios clínicos: Identificación presuntiva de Salmonella spp. y Shigella spp. en muestras clínicas (heces, sangre) y diferenciación de coliformes fermentadores y no fermentadores.
• Seguridad alimentaria: Detección y confirmación bioquímica de Salmonella spp. en alimentos y piensos según ISO 6579-1; control de calidad en materias primas y productos terminados.
• Control de calidad del agua: Caracterización de bacterias entéricas, detección de patógenos y evaluación microbiológica de aguas potables y recreativas.
• Ámbito académico e investigación: Enseñanza de identificación bacteriana y metabolismo de carbohidratos; cribado inicial de aislados bacterianos de fuentes ambientales.
• Industria farmacéutica: Detección de microorganismos objetables en productos farmacéuticos y monitoreo ambiental de áreas estériles.

Especificaciones técnicas

• Código de producto: BK221HA
• Formato: Polvo deshidratado estéril
• Presentación: Vial de 500 gramos
• pH final: 7.4 ± 0.2 a 25°C
• Indicadores: Rojo fenol (pH) y sales de hierro/tiosulfato sódico (H₂S)
• Cantidad por litro: 64.6 g en 1 L de agua purificada o destilada
• Apariencia deshidratada: Polvo homogéneo rosa-naranja
• Apariencia preparada: Medio rojo-naranja claro en tubos con pico de flauta
• Estándares: NF EN ISO 6579-1, NF EN ISO 19250
• Almacenamiento: Polvo a 10-30°C protegido de luz y humedad; tubos preparados a 2-8°C
• Cepas control recomendadas: E. coli (ATCC 25922), Salmonella Typhimurium (ATCC 14028), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853)
• Reacciones típicas:
• K/A: Slant rojo, fondo amarillo (Salmonella spp., Shigella spp.)
• A/A: Slant y fondo amarillo (E. coli, Klebsiella spp.)
• K/K: Slant y fondo rojo (Pseudomonas aeruginosa)
• Gas: Burbujas o grietas (E. coli, Klebsiella spp.)
• H₂S: Precipitado negro (Salmonella spp., Proteus spp.)

Instrucciones de preparación y uso

1. Pesar 64.6 gramos del medio deshidratado y añadir a 1 litro de agua purificada o destilada.
2. Mezclar hasta obtener una suspensión homogénea.
3. Calentar con agitación constante hasta disolver completamente.
4. Llevar a ebullición durante 1 minuto.
5. Dispensar en tubos estériles (aprox. 1/3 del volumen del tubo).
6. Esterilizar en autoclave a 121°C (15 PSI) durante 15 minutos.
7. Enfriar en posición inclinada para formar el pico de flauta.

Procedimiento de inoculación: – Tomar una colonia aislada con aguja estéril recta. – Puncionar el fondo del medio (casi hasta la base) y retirar la aguja por el mismo trayecto. – Estriar la superficie inclinada en zigzag. – Tapar los tubos de forma holgada para permitir el intercambio de gases. – Incubar a 35-37°C durante 18-24 horas (hasta 48 horas para ciertos microorganismos).

Interpretación: – Observar cambios de color en superficie y fondo del medio, formación de burbujas/grietas y/o precipitado negro.

Por qué elegir TSI agar de Biokar

• Cumple con los estándares internacionales ISO para diagnóstico clínico y alimentario.
• Permite la identificación simultánea de fermentación de carbohidratos, producción de gas y H₂S en un solo paso.
• Formulación optimizada y homogénea para resultados confiables y reproducibles.
• Respaldado por Biokar, fabricante de reconocida trayectoria y certificaciones internacionales.

Preguntas frecuentes

¿Qué cantidad de TSI agar deshidratado debo usar por litro?

Deben emplearse 64.6 gramos de medio en polvo por cada litro de agua purificada o destilada.

¿Qué indicadores contiene el TSI agar y cuál es su función?

Incluye rojo fenol (para detectar cambios de pH) y sales de hierro/tiosulfato sódico (para evidenciar producción de H₂S).

¿Para qué microorganismos es especialmente útil este medio?

Es fundamental para la identificación presuntiva de enterobacterias, especialmente Salmonella spp., Shigella spp., E. coli, Klebsiella spp. y Proteus spp.

¿Es necesario incubar en condiciones especiales?

La incubación estándar es a 35-37°C durante 18-24 horas, extendiéndose hasta 48 horas para productores débiles de H₂S.

¿Qué controles de calidad se recomiendan?

Se recomienda utilizar cepas control como E. coli (ATCC 25922), Salmonella Typhimurium (ATCC 14028) y Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853) para verificar la funcionalidad del medio.